Coleta e preparação de pêlos de mamíferos para identificação em microscopia óptica

Abstract

A microestrutura dos pêlos é uma ferramenta útil na identificação das espécies de mamíferos e é aplicada a várias disciplinas como ciências forenses, ecologia, epidemiologia, arqueologia e paleontologia. Os métodos aplicados na coleta e preparo de pêlos de mamíferos para sua identificação em microscopia óptica são numerosos e variam dos mais baratos e rápidos aos mais caros e laboriosos. O presente estudo tem por objetivos testar diferentes métodos de coleta, limpeza e preparo de pêlos de mamíferos para observação dos padrões cuticular e medular em microscopia óptica, comparar estes métodos com a literatura e descrever em detalhe um novo método recomendado. Para preparar a coleção de referência, os pêlos foram coletados do dorso de espécimes com localidade de coleta conhecida e coligidos em acervos museológicos. Impressões cuticulares foram obtidas pressionando os pêlos contra uma fina camada de esmalte para unhas incolor colocada sobre uma lâmina de vidro e seca por 15 a 20 minutos. Para observar o padrão medular, os pêlos foram submetidos a diafanização em água oxigenada comercial 30 volumes por 80 minutos. Lâminas permanentes foram montadas com Entellan e lâminas temporárias com glicerina. As vantagens desse método foram a fácil aquisição e manuseio do material e a prática execução, permitindo seu uso durante trabalhos de campo.Hair microstructure is a useful tool to identify mammals and is applied in several disciplines such as forensic sciences, ecology, epidemiology, arqueology and paleontology. The methods applied to collect and prepare mammal hairs to identify them under the optical microscopy are many and range from the most cheap and rapid to the most expensive and laborious. The present study aims to test different methods to collect, clean and prepare mammal hairs for cuticular and medullar patterns observation under optical microscopy, to compare these methods to the literature and to describe in detail a new suggested method. To prepare the reference collection, hairs were collected from the back of identified museum specimens with known collecting localities. Cuticular impressions were obtained pressing hairs against a thin nail varnish layer let dry for 15 to 20 minutes on glass slides. In order to observe the medullar pattern, hairs were submitted to diafanization with comercial oxigenated water 30 volumes for 80 minutes. Permanent glass slides were mounted with Entellan and temporary ones with glicerin. The advantages of this method are the easy aquisition and handling of the material and the practical execution, enabling its use in the field.